Desinfeksjonskamre er enheter og spesielle strukturer der forskjellige ting desinfiseres med fysiske, kjemiske eller begge midler, og insekter blir også ødelagt.

Descamere er installert i helseinstitusjoner, sanitær- og epidemiologiske institusjoner, bad, vaskerier, samt i noen industribedrifter der forurensede materialer er råvarer.

↯ Flere artikler i tidsskriftet

Hovedpunkter i artikkelen:

Betydning av desinfeksjonskammer

I komplekset av tiltak for forebygging av sykehusinfeksjoner i helseinstitusjoner utfører kammerdesinfeksjon en av hovedoppgavene. Det er en av de mest effektive og pålitelige metodene for desinfisering av dressinger, sengetøy, lin, yttertøy og sko.

Dessverre, i de fleste medisinske institusjoner, gis ikke kammerdesinfeksjon behørig oppmerksomhet. Kun føde-, infeksjons- og utfører desinfeksjon på en tilstrekkelig fullstendig måte.

Praktisk talt ingen kammerdesinfeksjon utføres fra avdelingene til den terapeutiske profilen.

Hvordan desinfisere medisinsk utstyr

I anbefalingen fra systemet beskrev eksperten i detalj hvordan man desinfiserer medisinsk utstyr.

Ekspertredaktør: desinfeksjon av medisinsk utstyr er fjerning av patogene bakterier, virus og sopp fra enheter, kanaler og hulrom til et nivå som er akseptabelt for bruk eller før-sterilisering, rengjøring og sterilisering.

Eksperten forklarte:

• hvem som er ansvarlig for organiseringen og kvaliteten på behandlingen av medisinsk utstyr;
• hvordan kontrollere kvaliteten på behandlingen av medisinsk utstyr.

Materialet er tilgjengelig for abonnenter og brukere via demotilgang. >>

Typer desinfeksjonskamre

I henhold til deres formål er dezcameras delt inn i:

1. Desinfeksjon.
2. Desinseksjon.

Sistnevnte ødelegger kun insekter der den kritiske temperaturen er lavere enn for ulike typer bakterier.

Dezkamera enhet

Av arten av enheten skilles:

• stasjonær;
• mobil;
• transportable (på tilhenger) kameraer.

Kameratyper

Kameratypene er:

• damp;
• damp-formalin;
• varm luft.

Designene til dampkamrene sørger for arbeid med damp-, damp-luft- og damp-formalin-metoder.

Stasjonære kameraer monteres i spesialrom – standard eller tilpasset, kalt desinfeksjonsblokker.

Desinfeksjonsaggregatet skal ha varme, vannforsyning, belysning, til- og avtrekksventilasjon.

Arealet til desinfeksjonsenhetens lokaler må samsvare med dimensjonene og antall desinfeksjonskamre i den.

Tilrettelegging av kammersalen

Kammerhallen består av to rom, isolert av en tverrgående skillevegg:

• lasterom;
• losseavdeling.

Den ene halvdelen - "skitten" - brukes til mottak, sortering og lasting av ting som er gjenstand for kammerdesinfeksjon (lasterom).

En annen - "ren" - for desinfiserte ting (tømmerom).

Dezkameraet er installert i skilleveggen mellom laste- og losserommet på en slik måte at det meste av kammeret er i losserommet, og bare en liten del av det blir igjen i lasterommet, nesten i flukt med skilleveggen.

Med dette arrangementet av desinfeksjonskammeret, er fronten av dets kontroll, tilførselsåpninger, viften og motoren plassert i avlastingsrommet og er tilgjengelig for inspeksjon og reparasjon.

All kontroll av apparatet utføres fra siden av losserommet. Skilleveggen er utstyrt med et hermetisk lukket vindu for overføring av dokumenter, penger og andre gjenstander som ikke er gjenstand for kammerdesinfeksjon, eller en boks med to dører.

Dimensjoner på kammersalen

Dimensjonene til kammerhallen avhenger av de ytre dimensjonene som brukes for denne typen kammer (tabell).

1. Rommets bredde består av den ytre bredden av kammeret, arealet som kreves for installasjon av en elektrisk motor med vifte, og gapet mellom enhetene og veggene.
2. Rommets lengde utgjøres av den ytre lengden av kammeret og arbeidsrommene fra siden av laste- og losserommene på 2500 mm hver, ved bruk av vogn for lasting øker lengden på rommet med 2 lengder av kammer.
3. Høyden på lokalene til kammerhallen er ikke mindre enn 3,5–4 m, tatt i betraktning den høye temperaturen på 25–30 °C, som oppstår i losserommet.

Ved lasteseksjonen til kammerhallen er det utstyrt en sanitærlås for desinfeksjonsapparater, bestående av et garderobeskap med garderober for yttertøy, toalett, dusjrom og garderobe med garderober for kjeledress. For å motta ting er en vindusdør utstyrt.

Ventilasjon av desinfeksjonsenheten

Tilførsels- og avtrekksventilasjon er utstyrt i rommene i kammerhallen, noe som gir en utveksling på minst 8 volumer i timen, mens det i losserommet råder bakvann, og i lasterommet en avtrekkshette for å hindre at infeksjon kommer inn i den.

Montering av gulv i desinfeksjonsrom

Gulvet er dekket med metlakh* fliser, veggene er malt med oljemaling for å lette rengjøring og desinfeksjon av lokalene.

* Metlakh-fliser - keramiske gulvfliser - brent før sintring av leirfliser med tilsetning av fargestoffer. Forsiden av gulvflisene kan være korrugerte, glatte, med innrykket mønster osv. Flisene legges på en sement-sand avrettingsmasse eller spesielle mastikk.

Sett og område av lokaler til desinfeksjonsenheten

I henhold til eksisterende standarder må desinfeksjonsenheten ha utstyret som er oppført nedenfor:

• bøtter (2 stk.);
• vekter;
• kleshengere-“hengere” (50 stk.);
• hydraulisk kontroll, klorholdige preparater;
• journal av kammer behandling av ting;
• instruksjoner om moduser, pass til installerte kameraer;
• brannslukker;
• votter (2 par);
• kjeledress i henhold til standardene;
• stativer for ting på den "rene" og "skitne" halvdelen;
• krakker, bord, stoler (2 stykker hver);
• utendørs termometre (1 rett og 1 vinkel);
• væskebeholdere;
• vekkerklokke eller timer;
• skap for desinfeksjonsmidler;
• slange 10 m lang;
• servant, børster, filler, såpe, håndkle;
• dresser for jobb på JOG;
• bakteriedrepende lamper.

Som regel består alle desinfeksjonskamrene av:

1. Fra selve kameraet.
2. Varmekilde.
3. Apparat for innføring av kjemikalier.
4. Vannforsyning og avløpssystemer.
5. Systemer for drenering av kondensat i kloakken.
6. Tilførsels- og avtrekksventilasjonsanlegg.

Antallet desinfeksjonsmidler i helseinstitusjoner avhenger av antall senger på sykehuset:

• opptil 100 senger - 0,5 priser;
• 100-250 senger - 1 stilling;
• 250-400 senger - 2 stillinger;
• 400-500 senger - 4 stillinger;
• mer enn 500 senger - 1 ekstra stilling etableres for hver 250 senger.

Overvåking av driften av desinfeksjonskamrene

Driften av enheten må kontrolleres av tekniske og biologiske metoder.

Teknisk kontroll utføres for å etablere brukbarheten til alt utstyr (trykkmåler, termometer, ventiler), samt damp- og luftkanaler.

Integriteten til apparatet og dets utstyr kan bestemmes visuelt. I tillegg, for å kontrollere driften av ventiler, dens tetthet eller komponenter, brukes patency av damprørledninger, en testkjøring av damp og testoppvarming.

Hvis rørseksjonen bak den etter lukking av ventilen fortsetter å varmes opp, indikerer dette en ventildefekt (slipper gjennom damp). Disse ventilene må repareres eller skiftes ut.

Indikasjoner på driften av desinfeksjonskamre i medisinske institusjoner

Nøyaktigheten til termometeravlesningene kontrolleres som følger: testtermometeret, sammen med kontrolltermometeret (kalibrert), nedsenkes i vann oppvarmet til henholdsvis 60-80-90 ° C, mens termometeravlesningene sammenlignes. Forskjellen mellom avlesningene til de testede og kontrolltermometerne bør ikke overstige ±1 °C.

For å kontrollere funksjonen til trykkmålere, er en trykkmåler under test festet til flensen til en treveisventil, en kontrolltrykkmåler er koblet parallelt, og en konklusjon blir gjort om dens brukbarhet basert på forskjellen i avlesningene til de testede og kontrollerte trykkmålerne.

Den defekte trykkmåleren erstattes med en ny - kontrollert og forseglet.

Graden av oppvarming i termiske enheter bestemmes av en objektiv metode - termometri. Den graderte delen av det eksterne termometeret er plassert utenfor, dens ende med en kvikksølvkule er satt inn i den.

Hele desinfeksjonsprosessen styres av et psykrometer.

Funksjoner ved klargjøring av medisinsk utstyr for sterilisering som sykepleiere overser

Pakking og lasting av medisinsk utstyr i sterilisatoren må gjøres riktig. Sterilitet avhenger av dette.

Samsvarlig stabling forstyrrer ikke fjerning av luft fra steriliseringskammeret og lar steriliseringsmidlet komme i full kontakt med det medisinske utstyret.

Emballasje av glass og gummiprodukter skal også gjøres på en bestemt måte.

Temperaturdynamikken registreres i følgende trinn:

• temperatur før oppvarming;
• oppvarming til temperaturen der eksponeringsnedtellingen begynner;
• opprettholde en viss temperatur under eksponering.

Alle de ovennevnte temperaturavlesningene er registrert i protokollen for kammeroperasjonen (vedlegg 2).

Avlesningene til eksterne termometre indikerer bare temperaturen på luften og dampen i kammeret, men ikke temperaturen som var i de desinfiserte tingene inne i denne perioden.

For å bestemme temperaturen i desinfiserte ting, som gir en bakteriedrepende (insektdrepende) effekt, brukes maksimale termometre.

Effektiviteten av desinfeksjon avhenger ikke bare av den nødvendige temperaturen i kammeret, men også av dens jevne fordeling i tingene som er lastet inn i det.

Ensartetheten av temperaturfordelingen i ting på forskjellige steder i kammeret bestemmes både vertikalt (på nivå med kragen på klær og lommer) og horisontalt (i ting som ligger i frontdelen, foran døren til losserommet; i ting som er plassert i midtdelen, og i ting som vender mot lastedøren til kammeret).

Ensartetheten av temperaturfordelingen inne i ting bestemmes ved hjelp av 9 eller 15 maksimale termometre, avhengig av volumet til kammeret.

I lastekammeret må maksimale termometre plasseres i tykkelsen på ting (under krager, i lommer eller brett på klær).

For å gjøre dette plasseres termometre i spesielle poseposer sammen med testobjekter og plasseres på 9 punkter i henhold til et skjema som ligner på arrangementet av forseglinger på en konvolutt, på to nivåer: i øvre og midtre deler av kammeret.

Maksimaltermometrene er underlagt en systematisk kontroll, som utføres på samme måte som de eksterne kammertermometrene.

Standardene for bakteriologisk kontroll av påliteligheten til desinfeksjon av ting i kammeret er følgende kulturer:

1. Når du behandler ting fra foci av infeksjoner forårsaket av ikke-sporedannende mikrober, Staphylococcus aureus ( Staphylococcus aureus), stamme 906.
2. Når du behandler ting fra foci av tuberkulose - ikke-patogen mykobakterie ( Mycobacterium), stamme B-5.
3. Ved behandling av ting fra foci av infeksjoner forårsaket av sporedannende mikrober, kultur Bacillus cereus, stamme 96, i sporeform (antracoid).

Testkulturer bør ha typiske egenskaper. Bakteriologisk kontroll av effektiviteten av desinfeksjon av ting i kamrene utføres ved hjelp av biologiske indikatorer BIK-ILC, brettet inn i et pakkebånd.

Bærerne tilberedt på denne måten er nummerert og plassert i en pose som måler 10 × 15 cm, som har et spesielt rom for et maksimalt termometer. Posene plasseres ved kontrollpunktene.

Etter at de biologiske NIR-ILC-indikatorene er testet, tas de ut av posene, legges i en plastpose og leveres til laboratoriet med riktig veiledning for videre forskning. Hvis det påvises vekst i minst én av de biologiske indikatorvekstene, kontrolleres kammerdriften på nytt.

Samtidig blir dens tekniske tilstand, hastigheten på lasting av ting og riktigheten av deres plassering i cellen kontrollert mer nøye.

Desinfeksjonskamre, som annet utstyr, krever reparasjon og rettidig utskifting. Etter 10 års drift kan desinfeksjonskammeret ikke lenger fungere effektivt nok, så det er uakseptabelt å kjøpe nye på restbasis. Disse kostnadene bør inkluderes i programmer for forebygging av sykehusinfeksjoner i medisinske institusjoner.

Det er veldig viktig å ha et byttefond for sengetøy for rettidig gjennomføring av kammerdesinfeksjon, som vil tillate å bringe volumet av implementeringen til 100% i alle medisinske avdelinger av helseinstitusjoner.

Gjennomføring av en fullstendig kammerdesinfeksjon av sengetøy i helseinstitusjoner er regulert av følgende forskriftsdokumenter:

1. SaNPiN 2.1.3.1375-03 "Hygieniske krav til plassering, arrangement, utstyr og drift av sykehus, fødesykehus og andre medisinske sykehus".
2. SP 3.5.1378-03 "Sanitære og epidemiologiske krav til organisering og gjennomføring av desinfeksjonsaktiviteter".
3. Ordre fra Helsedepartementet i USSR av 03.09.1991 nr. 254 "Om utvikling av desinfeksjonsvirksomhet i landet".
4. Konseptet for forebygging av sykehusinfeksjoner, godkjent av helsedepartementet i Russland 06.12.1999.
5. Ordre fra Helsedepartementet i USSR datert 31. juli 1978 nr. 720 "Om forbedring av medisinsk behandling for pasienter med purulente kirurgiske sykdommer og styrking av tiltak for å bekjempe sykehusinfeksjon".
6. Ordre fra Helsedepartementet i USSR nr. 440 av 20. april 1983 "Om ytterligere tiltak for å forbedre medisinsk behandling for nyfødte barn".
7. Ordre fra det russiske helsedepartementet datert 26. november 1997 nr. 345 "Om forbedring av tiltak for forebygging av sykehusinfeksjoner i obstetriske sykehus".
8. Metodologiske anbefalinger fra Helsedepartementet i USSR datert 28. september 1989 nr. 15 / 6-20 "Forebygging av sykehusinfeksjoner hos nyfødte og små barn på barnesykehus".
9. Ordre fra Helsedepartementet i USSR datert 04.08.1983 nr. 916 "Instruksjon om sanitær- og anti-epidemiregimet og arbeidsbeskyttelse for personell ved sykehus med infeksjonssykdommer (avdelinger)".
10. Retningslinjer for organisering og gjennomføring av et kompleks av sanitær- og anti-epidemitiltak i aseptiske avdelinger (blokker) og avdelinger datert 30. april 1986 nr. 28-6 / 15.
11. Kontrollmetoder. Biologiske og mikrobiologiske faktorer. Kontroll av desinfeksjonskamre. Metodiske instruksjoner. MUK 4.2.1035-01.

Ved organisering eller overhaling (ombygging) av desinfeksjonsenhetens lokaler, kan man bli veiledet av følgende dokumenter: "Arket med utstyr for sykehus, poliklinikker", godkjent av USSRs helsedepartement 03.05.1963 nr. 201 og " Normaler for hovedplanelementene for boliger og offentlige bygg”, avsnittet ”Medisinske bygg. Sykehus. Desinfeksjonsavdelinger” NP 6.1.1.11-83, godkjent etter ordre fra Statens sivilingeniør i USSR datert 25. mars 1983 nr. 81.

Til tross for at disse dokumentene ikke lenger er gyldige, og nye dokumenter som normaliserer det nødvendige arealet og kapasiteten til desinfeksjonskamrene ikke er godkjent, kan følgende data brukes til å organisere arbeidet til desinfeksjonsenhetene.

Utstyre med desinfeksjonskamre og desinfeksjonsområder

* Høyden på desinfeksjonsenheten er minst 3 m overalt.

** Desinfeksjonskamre, bortsett fra VFS2 og VFS3, krever en dampkilde.

Kameraer er installert i medisinske og forebyggende og sanitære og epidemiologiske institusjoner, så vel som i industribedrifter. Desinfeksjonskamre er designet for damp-luft- og damp-formalin-desinfeksjon av klær, sko, sengetøy og andre gjenstander. Kamrene er utstyrt med en MINITERM 300 mikroprosessor (automatisk og manuell styring), ved hjelp av hvilken innstilt temperatur og tidsforsinkelse for desinfeksjon stilles inn.

Stasjonære kameraer er installert i spesielle rom (kammerhaller), som er delt av en skillevegg i to isolerte deler eller halvdeler. Kammere er montert i skilleveggen slik at dørene åpnes i forskjellige halvdeler, og kammerdesinfeksjon av ting foregår i rene og skitne rom. I lossedelen skal det være instruksjoner for arbeid på hvert kamera, samt interne forskrifter.

Bærbare kamre er sammenleggbare og semi-sammenleggbare og har ikke egen bevegelsesbane. Desinfeksjon, avhengig av motstanden til gjenstandene som skal desinfiseres mot desinfeksjonsmidlet, kan være damp-luft, damp-formalin og damp.

Ved de angitte temperaturene utføres oppvarming; innen 10 - 15 minutter, hvis kammeret er av metall; innen 20 - 30 minutter, hvis kammeret er laget av murstein eller betong. Ting lastes inn i kammeret fra lasterommet jevnt gjennom hele arbeidsvolumet. Filtstøvler og -støvler henges opp ned, støvler henges i nett eller legges på vognrister. Desinfiserte ting losses fra kammeret og inn i losserommet.

Desinfeksjonskammeret betjenes av to desinfeksjonsapparater. Han fører også logg over kameraet. Vedlikehold og drift av kjeler bestemmes av spesielle regler, hvis implementering er obligatorisk.

Desinfeksjonskamre fungerer enten med egen dampgenerator eller ved anlegg med sentralisert damptilførsel. Elektrisk dampgenerator PEL-100 er designet for damptilførsel av desinfeksjonskamre med mettet vanndamp i helseinstitusjoner som ikke har sentralisert dampforsyning. Damptilførselstrykket til kammeret bør ikke overstige 0,2-0,24 MPa (2-2,4 kgf/cm2). I henhold til dampformalinmetoden desinfiseres ting som forringes ved temperaturer over + 57-59 ° C: lær, pels, gummi, sko, etc.

Etter å ha stilt inn innstilte temperatur- og tidsverdier, trykk på "Start"-knappen, og vann helles inn i dampgeneratoren. Tilførsel av vann til dampgeneratoren og produksjon av damp med maksimalt trykk skjer automatisk.

I enheter for desinfeksjon utføres "Formalin Pouring" og "Ammonia Pouring" (for formalin-nøytralisering) i halvparten av mengden formalin som brukes. Sammenlignet med dem er tyske mye enklere og billigere. 1 time og 15 minutter ventilasjon (Liftung). 1. Denne stillingsbeskrivelsen definerer desinfeksjonsmaskinens funksjonelle plikter, rettigheter og ansvar.

Mottak, regnskap, oppbevaring og distribusjon av plantevernmidler og produkter for tilberedning av agn i samsvar med kravene i instruksjonene. Avhengig av de fysiske og chem. midler, to-rye brukes ved desinfeksjon, D. to er delt inn i tre hovedgrupper: damp, termisk og gass. Det er mulig å skille ut den fjerde gruppen - kamre av blandet type, hvor høy t ° og en slags kjemisk behandling påføres samtidig. substans.

Dimensjoner (intern) til desinfeksjonskamrene varierer fra 0,5 Jit3 til 10 m*, avhengig av formålet. Det er damp D. til ubevegelig, stasjonær type og mobil. De kan lages av platejern, tre, presenning, lerret etc. Desinfeksjon i D. til Denne gruppen utføres vanligvis med flytende damp uten overtrykk.

Etter å ha nådd t ° 98-99 °, forblir ting i kammeret i ca! / 2-1 timer, og deretter fjernes vedlegget med ting, og ting blir ventilert. De positive egenskapene til Kapustin-kameraet er enkelheten til enheten, enkelheten og lave produksjonskostnadene. Driften av kammeret fortsetter vanligvis uten overtrykk; sistnevnte kan økes ved å innsnevre damprøret, i hvilket tilfelle t° inne i apparatet lett kan bringes opp til 102-103°.

Rostovtsevs kammer er en rektangulær langstrakt boks laget av galvaniserte jernplater og belagt med tre på utsiden. Kammerkapasitet 1-1,5 m3. Kammeret er utstyrt med to dører som gjør at det kan installeres i et oppdelt rom - smittsomt og rent - og for å laste og losse ting fra forskjellige sider. Krupins kamre ble produsert i tre størrelser: 9,1 m3, 4,5 m* og 2,76 m3; av disse var de første skapformede, og resten var sylindriske.

Av enhetens natur er desinfeksjonskamrene stasjonære, mobile og bærbare. Kammerdesinfeksjon - Desinfeksjonskamre er enheter eller enheter for å utføre damp, damp-luft, damp-formalin, luft- og gassdesinfeksjon og desinfeksjon i dem. En av dem, plassert i lasterommet, sorterer gjenstandene for desinfeksjon (desinfeksjon) og laster dem inn i kammeret.

Den russiske føderasjonen MUK (retningslinjer)

MUK 4.2.1035-01 Kontroll av desinfeksjonskamre

sette et bokmerke

sette et bokmerke

MUK 4.2.1035-01

METODOLOGISKE INSTRUKSJONER

4.2. KONTROLLMETODER.
BIOLOGISKE OG MIKROBIOLOGISKE FAKTORER

KONTROLL AV DESINFISERINGSKAMRE

Introduksjonsdato 2001-10-01

GODKJENT av den russiske føderasjonens overlege, første visehelseminister i Den russiske føderasjonen G.G. Onishchenko 23. mai 2001

1. Generelle bestemmelser og virkeområde

1.1. Disse MUKene er satt sammen på grunnlag av "Retningslinjer for kontroll av desinfeksjonskamre", godkjent i 1995.

1.2. Retningslinjene er beregnet på spesialister som kontrollerer driften av desinfeksjonskamrene.

1.3. For å sikre pålitelig desinfeksjon av ting, er desinfeksjonskamre lokalisert i organisasjoner fra Helsedepartementet i Den russiske føderasjonen eller andre avdelinger underlagt teknisk, termisk og bakteriologisk kontroll.

Kontroll av desinfeksjonskamre utføres på en planlagt måte av organisasjoner med en desinfeksjonsprofil som har passende lisens, minst en gang i kvartalet.

2. Teknisk kontroll

2.1. Den tekniske kontrollen av desinfeksjonskamrene tar sikte på å etablere brukbarheten til både kammeret og dets utstyr (trykkmåler, termometer, ventiler), samt damp- og luftkanaler.

2.2. Integriteten til desinfeksjonskammeret og dets utstyr kan bestemmes visuelt. I tillegg brukes for å kontrollere driften av ventilene, tettheten til kammeret eller dets deler, åpenheten til damprørledningene, metodene for testdampoppstart og prøveoppvarming.

Hvis rørseksjonen bak den fortsetter å varmes opp etter å ha stengt ventilen, indikerer dette en defekt i ventilen (den passerer damp). Disse ventilene må repareres eller skiftes ut.

2.3. Nøyaktigheten til termometeravlesningene kontrolleres som følger: testtermometeret, sammen med kontrolltermometeret (kalibrert), nedsenkes i vann oppvarmet til henholdsvis 60-80-90 ° C, mens termometeravlesningene sammenlignes. Forskjellen mellom avlesningene til de kontrollerte og kontrolltermometerne bør ikke overstige +/-1 °C.

2.4. For å kontrollere funksjonen til trykkmålere, er en trykkmåler under test festet til flensen til en treveisventil, en kontrolltrykkmåler er koblet parallelt og, basert på forskjellen i avlesningene til den testede og kontrollen, en konklusjon er laget om dens brukbarhet.

Den defekte trykkmåleren erstattes med en ny, testet og forseglet.

2.5. Riktig drift av dysen, designet for produksjon av fine formalinløsninger, bestemmes av en av to metoder:

2.5.1. Den første, mer objektive metoden er som følger: 200-300 ml lett farget vann helles i dysetanken (blekk, magenta, blått tilsettes), en skjerm (et ark med hvitt papir eller papp) forsterkes på veggen på motsatt side av dysen og væsken sprayes. Se så på skjermen. I nærvær av en jevn fordeling og overvekt av små flekker, konkluderes det om tilfredsstillende drift av dysen.

Med en ujevn fordeling av flekker og overvekt av store flekker, flekker, striper, konkluderes det om den utilfredsstillende driften av dysen. Sistnevnte er gjenstand for reparasjon, hvoretter munnstykket bør testes på nytt.

2.5.2. I det andre tilfellet fjernes en enkelt kameraparaply, og hvis den har en uttrekkbar stripe, utvides den. Dette gjør det mulig å tydelig se munnstykket til munnstykket som sprayer formalinet. Hvis paraplyen består av tre deler, flytt den midtre delen av paraplyen til de angitte formålene. Deretter slippes damp inn i dysen, og med kammerdøren åpen observeres driften av dysen, hvis tank er foreløpig fylt med vann. Hvis små dråper dominerer når væske sprøytes med en dyse, anses dysedriften som tilfredsstillende.

Med overvekt av store dråper, som umiddelbart faller ned på kammergulvet etter å ha forlatt dysedysen, anses dysen som uegnet for videre drift og må justeres.

2.6. Kontroll av Benjaminson-Krupin-apparatet ("BK") utføres ved en testkjøring med damp. For å gjøre dette helles formalin i tanken til apparatet, der konsentrasjonen av formaldehyd er foreløpig bestemt i laboratoriet. Deretter slippes damp ut i tanken, som trekker ut formaldehydet fra den kokende formalinløsningen. Effektiviteten av formaldehydgjenvinning fra formalin bør kontrolleres hvert femte minutt fra det øyeblikket damp innføres i apparatet ved å ta prøver av formalin i en mengde på 10 ml gjennom apparatets dreneringsventil.

Fire slike prøver bør tas: den første - etter 5 minutter, den andre - etter 10 minutter, den tredje - etter 15 minutter, den fjerde - etter 20 minutter.

Prøver sendes til laboratoriet for å bestemme formaldehydinnholdet i dem, og basert på disse analysene sammenstilles dynamikken i formaldehydekstraksjon fra formalin.

Som regel er formaldehyd fraværende i den tredje prøven (etter 15 min). Det er ekstremt sjeldent at det blir funnet i den 4. prøven (etter 20 minutter).

Disse resultatene gir grunnlag for å konkludere med at apparatet fungerer ganske tilfredsstillende. Hvis det er en viss mengde formaldehyd i den fjerde prøven av formalinløsningen, bør testen gjentas. Hvis det derimot oppdages formaldehyd under den andre kontrollen, bør den femte prøven tas 5 minutter etter den fjerde prøven. Hvis det ikke finnes noe formaldehyd i det, bør driften av "B-K"-apparatet anses som tilfredsstillende, og bemerk at fullstendig ekstraksjon av formaldehyd fra formalinløsningen i apparatet avsluttes bare etter 25 minutter.

Hvis det blir funnet formaldehyd i prøven etter en 25-minutters eksponering, bør dette apparatet "B-K" anerkjennes som uegnet for videre drift, og det bør iverksettes tiltak for å eliminere funksjonelle eller strukturelle defekter ved apparatet.

2.7. Tettheten til dørene i dampkammeret KS-3 kontrolleres ved et damptrykk i kammeret på 0,5 atm.; i dampformalin - ved en temperatur på 80-97 ° C i henhold til et vinkeltermometer. Under disse forholdene må ikke damp slippe ut gjennom kammerdørene.

3. Termisk kontroll

3.1. Graden av oppvarming i termiske desinfeksjonskamre bestemmes av en objektiv metode - termometri ved bruk av termometre. Den graderte delen av det eksterne termometeret er plassert utenfor kammeret, dens ende med en kvikksølvkule settes inn i kammeret.

Utendørstermometre finnes i to typer: rett og vinklet.

Hele desinfeksjonsprosessen i kammeret styres av et psykrometer.

3.2. Temperaturdynamikken i kammeret registreres i følgende trinn:

• temperatur før oppvarming av kammeret;
• varme opp kameraet til temperaturen der eksponeringsnedtellingen begynner;
• opprettholde en viss temperatur under eksponering.

Alle temperaturavlesningene ovenfor er registrert i protokollen for kameraoperasjonen.

3.3. Avlesningene til kammerets eksterne termometre indikerer kun temperaturen på luften og dampen i kammeret, men ikke temperaturen som var i de desinfiserte tingene i kammeret i denne tidsperioden. Maksimumstermometre brukes til å bestemme temperaturen i desinfiserte ting, noe som gir en bakteriedrepende (insekticid) effekt.

Effektiviteten av desinfeksjon i desinfeksjonskamre avhenger ikke bare av den nødvendige temperaturen i kammeret, men også av dens jevne fordeling i tingene som er lastet inn i kammeret.

3.3.1. Ensartetheten i temperaturfordelingen i ting på forskjellige steder i kammeret bestemmes både vertikalt (på nivå med kragen på klær og lommer) og horisontalt (i ting foran i kammeret - foran døren til losserommet av kammeret; i ting som er plassert i den midtre delen av kammeret, og i ting som vender mot lastedøren til kammeret). Bestemmelsen av jevnheten av temperaturfordelingen inne i ting utføres ved å bruke 9 eller 15 maksimale termometre, avhengig av volumet til kammeret.

3.3.2. I lastekammeret bør maksimale termometre plasseres i tykkelsen på ting (under krager, i lommer eller folder av klær). For å gjøre dette plasseres termometre i spesielle poseposer sammen med testobjekter og plasseres på 9 punkter i henhold til et skjema som ligner på arrangementet av forseglinger på en konvolutt, på to nivåer: i øvre og midtre deler av kammeret.

Desinfeksjonskammervolum >2 m

Desinfeksjonskammervolum 2 m

Denne plasseringen av termometre lar deg få informasjon om temperaturregimet i ulike deler av kammeret. Når du utfører temperaturkontroll av dezkameraer, er det vanlig å legge til et annet termometer, som er plassert i kammeret på nivå med hjørnetermometeret og tjener til å kontrollere avlesningene til sistnevnte.

3.4. Med en jevn fordeling av temperatur i ting i kammeret, er forskjellen i avlesningene til termometre (forskjeller) tillatt innenfor følgende grenser:

• 3 °С - med dampmetoden for desinfeksjon;
• 5-7 ° С - med damp-luft-metoden for desinfeksjon;
• 2-5 °С - med damp-formalin-metoden for desinfeksjon.

I dette tilfellet bør det tas i betraktning at den nedre grensen for temperaturforskjellen må tilsvare den nedre grensen for desinfeksjonsmodusen som kontrolleres i henhold til avlesningene til det eksterne termometeret:

• 100-104 °С - med dampmetoden for desinfeksjon;
• 80-97 °С - med damp-luft-metoden for desinfeksjon;
• 49-57 ° С - med damp-formalin-metoden for desinfeksjon.

3.5. Årsaken til avviket mellom de angitte temperaturparametrene kan være feil belastning av kammeret (overskrider de etablerte belastningsnormene eller overpakking på visse steder i kammeret). Hvis denne grunnen er utelukket, er det nødvendig å nøye undersøke den tekniske tilstanden til kammeret.

3.6. Maksimaltermometre er underlagt systematisk verifisering, som utføres på samme måte som de eksterne kammertermometre (klausul 2.3.).

4. Utstyr, materialer, laboratorieglass og reagenser

5. Bakteriologisk kontroll

5.1. Standardene for bakteriologisk kontroll av påliteligheten til desinfeksjon av ting i kammeret er følgende kulturer:

• når du behandler ting fra foci av infeksjoner forårsaket av ikke-sporedannende mikrober - Staphylococcus aureus (Staphylococcus aureus), stamme 906;
• når du behandler ting fra foci av tuberkulose - ikke-patogen mycobacterium (Mycobacterium), stamme B-5;
• når du behandler ting fra foci av infeksjoner forårsaket av sporedannende mikrober, en kultur av Bacillus cereus, stamme 96, i sporeform (anthracoid).

5.2. Testkulturer bør ha typiske egenskaper og følgende motstand:

• Staphylococcus aureus - til en temperatur på 60 ° C i 25 minutter, til en 2% formalinløsning i 20 minutter;
• Mycobacterium, stamme B-5, til en temperatur på 60 °C i 60 minutters eksponering, til en 5 % formalinløsning i en eksponering på 25 minutter;
• sporer av B.cereus, stamme 96, til virkningen av rennende damp i 4-6 minutter eller koking i 25 minutter.

5.3. For å opprettholde stabiliteten til kulturen bør den lagres ved en temperatur på +4 °C. Staphylococcus aureus og B.cereus - på kjøtt-pepton agar (MPA) i en kolonne under et lag med steril vaselinolje; kultur B-5 - på et potetglyserinmedium eller 2% glyserol MPA. Du kan lagre kulturer i forseglede ampuller, frysetørket. Ettersåing av arbeidskulturer av stafylokokker, B.cereus og B-5 bør gjøres minst en gang hver tredje måned.

6. Utarbeidelse av biologiske indikatorer som brukes
å bestemme motstanden til kulturer og i kontroll av desinfeksjonskamre

6.1. Testen av resistens av avlinger mot formalin og damp utføres på cambric- eller calico-testobjekter. For å forberede dem, senkes et stykke hvit cambric eller calico i 24 timer i kaldt vann fra springen, vaskes deretter med såpe, kokes, tørkes og strykes med et varmt strykejern (for å fjerne fingergrepet). I det forberedte stoffet trekkes trådene ut med en nål i lengderetningen i en avstand på 11 mm fra hverandre, og i tverrretningen - i en avstand på 6 mm. Langs disse linjene klippes stoffet med saks til testobjekter og 50 stykker legges ut i petriskåler. Sistnevnte pakkes inn i papir og steriliseres i en autoklav i 30 minutter ved en temperatur på 120 ° C (1 atm.).

6.2. Indikatorer for biologisk kontroll av effektiviteten av desinfeksjon av ting i cellene er insulinampuller med tørre kulturer av bakterier (biologisk indikator BIK-ILC).

6.3. Bakteriekulturer tilberedes som følger:

6.3.1. Den daglige buljongkulturen av stafylokokker inokuleres på en skrånende overflate av næringsagar for voksende mikroorganismer og inkuberes i en termostat ved en temperatur på (37+/-1) °C i 18-24 timer, medium til en konsentrasjon på 2-10 mc. i 1 ml. Deretter, med en automatisk pipette, påføres 0,02 ml kultursuspensjon direkte på den nedre indre overflaten av insulinbeholderen eller Eppendorf-røret. Insulin hetteglass lukkes med en propp av bomullsbind. Hetteglass og Eppendorf-rør plasseres i en termostat ved 37 °C i en dag for å tørke. Biologiske indikatorer BIK-ILC oppbevares i et husholdningskjøleskap. Utløpsdato - 1 år.

6.3.2. Kulturen av mykobakteriestamme B-5 dyrkes på et potetglyserinmedium eller 2 % glyserolnæringsagar ved en temperatur på (37+/-1) °C i 4 dager. Deretter tilsettes sukrose-gelatinmedium og den dyrkede kulturen vaskes av overflaten av agaren ved bruk av sterile perler. Det samme mediet brukes for å bringe konsentrasjonen av kulturen til 2-10 mc. i 1 ml. Med en automatisk pipette påføres 0,02 ml av suspensjonen på den indre overflaten av insulinbeholderen og lukkes med en propp av bomullsgass. Sett i en termostat ved 37 ° C i en dag for å tørke. Biologiske indikatorer BIK-ILC oppbevares i kjøleskap. Utløpsdato - 6 måneder.

6.3.3. For å få sporer blir B.cereus-kulturen sådd på skrå hveteagar og dyrket i to dager i termostat ved 37 °C, og deretter i ytterligere 5-7 dager ved romtemperatur på et mørkt sted. Kulturen kontrolleres for spordannelse før vask (Gramfargede utstryk ses under et mikroskop). Kulturer som inneholder minst 80-90 % sporer når man ser på 5 synsfelt er egnet for videre arbeid. Deretter vaskes den dyrkede kulturen av overflaten med sukrose-gelatinmedium og sterile perler. Deretter justeres konsentrasjonen av sporer til 2-10 mikron. i 1 ml. Med en automatisk pipette påføres 0,02 ml suspensjon på den indre overflaten av et insulinbeholder eller Eppendorf-rør. Insulin hetteglass lukkes med en propp av bomullsbind. Hetteglass og Eppendorf-rør plasseres i en termostat ved 37 °C i en dag for å tørke. Utløpsdato - 1 år.

7. Bestemmelse av kulturers motstand mot virkningen av formalin

7.1. På dagen for forsøket tilberedes formalinarbeidsløsninger i sterilt destillert vann. Konsentrasjonen av løsningen tas avhengig av kulturtypen (resistensen til Staphylococcus aureus, stamme 906, testes i en 2 % løsning, og resistensen til Mycobacterium-kulturen, stamme B5, testes i en 5 % formalinløsning ). Når du setter opp eksperimenter, helles det nødvendige volumet av den tilsvarende formalinløsningen i en glasskolbe med pipette (basert på 3 ml for hvert testobjekt). Ved å riste kolben lett blir alle testobjekter fuktet med en desinfiserende løsning, og fra dette øyeblikket begynner eksponeringsnedtellingen. Etter 10-20-30 minutter (for kulturer av Staphylococcus aureus, stamme 906) og etter 15-25-35 minutter (for tester infisert med kulturen av Mycobacterium, stamme B-5), fjernes 2 testobjekter fra formalinløsningen med steril pinsett og nedsenket for nøytralisering i reagensglass med 10 ml 2 % ammoniakkløsning (1 ml 25 % ammoniakk + 9 ml sterilt destillert vann). Etter 5 minutter overføres testobjektene til et andre reagensrør med 10 ml sterilt saltvann og oppbevares i 5 minutter. Deretter inokuleres hvert testobjekt i reagensglass med 5 ml av passende flytende næringsmedium.

7.2. Kontrollen er to testobjekter som ikke er eksponert for formalin, men nedsenket i et reagensrør med sterilt saltvann i en periode lik virkningen av formalin. Før såing vaskes kontrollprøveobjektene på samme måte som de eksperimentelle.

7.3. Avlinger plasseres i en termostat ved (37+/-1) °C. Foreløpige resultater tas i betraktning etter 24-48 timer (for tester med Mycobacterium, stamme B-5, etter 4 dager), endelige resultater etter 7 dager.

8. Bestemmelse av varmetoleranse for avlinger

8.1. Motstanden til avlinger mot temperatur kontrolleres i et vannbad (helst med en termostat).

8.2. Daglige kulturer av Staphylococcus aureus, stamme 906, og 4 dager gamle Mycobacterium, stamme B-5, dyrket på henholdsvis MPA (pH = 7,2-7,4) og 2 % glyserolagar, vaskes av med saltvann (5 ml per petriskål). ), filtrert gjennom et bomullsgasfilter og fortynnet til en konsentrasjon på 2 milliarder mikrobielle legemer i 1 ml i henhold til en optisk standard. De resulterende suspensjonene helles i tre sterile reagensrør (ett reagensglass for hver eksponering), 1 ml hver, som plasseres i et vannbad forvarmet til 60 °C. For å overvåke temperaturen senkes et termometer dyppet i et reagensrør med vann i badekaret. Etter 15-25-35 minutter tas 1 ml av suspensjonen fra reagensrørene med en suspensjon av kulturen av Staphylococcus aureus, stamme 906, og etter 40-60-80 minutter fra reagensrørene med en suspensjon av kulturen av Mycobacterium, stamme B-5, for hver eksponering og inokulerte 0,5 ml i to reagensglass med 5 ml kjøtt-pepton eller 2 % glyserolbuljong.

8.3. Avlingene holdes i en termostat ved (37+/-1) °C i 7 dager. Foreløpig regnskapsføring av resultatene utføres etter 24-48 timer (for kulturen av Staphylococcus aureus, stamme 906) og etter 72-96 timer (for kulturen av Mycobacterium, stamme B-5).

8.4. For å teste varmebestandigheten til B.cereus-kulturer plasseres tre reagensrør med sporesuspensjon i et kokende vannbad i 15-25-35 minutter. Etter dette tidspunktet inokuleres 0,5 ml av suspensjonen fra det tilsvarende reagensglasset i to reagensglass med kjøtt-peptonbuljong (MPB) og inokuleringene inkuberes i 7 dager ved en temperatur på (37+/-1) °C. Kontrollen er såing av en uoppvarmet suspensjon av testkulturen i kjøtt-pepton eller 2 % glyserolbuljong.

9. Bestemmelse av motstand av B. cereus-sporer mot damp

9.1. Dampmotstanden til B. cereus-sporer testes i Oil-Muller-apparatet som følger:

Vann helles i en kolbe og kokes opp. To infiserte testobjekter plasseres på det forhåndsbrente nettet. Gitteret innføres i virkesonen til den strømmende dampen. Etter 3 minutters dampvirkning fjernes testene og inokuleres i to reagensrør med buljong. To tester påføres igjen på det avfyrte nettet i en eksponering på 4 minutter, og dette gjentas, og øker eksponeringen igjen med 1 minutt til 9 minutter. De sådde testobjektene plasseres i en termostat ved en temperatur på (37+/-1) °C i 7 dager. Foreløpig regnskapsføring av resultatene gjennomføres etter 48 timer.

9.2. Oil-Muller-apparatet kan erstattes av en kolbe med en kapasitet på 0,75-1 l med bred langstrakt hals. Korkproppen på kolben kuttes av vertikalt med 1/3 for å frigjøre damp. En ledning skal føres gjennom korken, med et metallnett på 3-3,5 cm i diameter i enden, som testobjekter plasseres på.

9.3. Hvis kulturer vokser i kjøtt-pepton eller 2 % glyserolbuljong etter eksponering for formalin, passende temperatur og damp, er utplettering på nytt på fast næringsmedium nødvendig for å verifisere tilstedeværelsen av vekst av den opprinnelige kulturen.

9.4. Kulturene som brukes til fremstilling av biologiske NIR-ILC-indikatorer, underkastes kontroll for termisk og formalinresistens minst en gang hver 6. måned.

10. Gjennomføring av bakteriologisk kontroll

10.1. Bakteriologisk kontroll av effektiviteten av desinfeksjon av ting i cellene utføres ved å bruke indikatorer for biologisk BIK-ILC, tilberedt i henhold til metoden spesifisert i avsnitt 4.4.3., og pakket i et pakkebånd. Bærerne tilberedt på denne måten nummereres og legges i en pose som måler 10x15 cm, som har et spesialrom for maksimalt termometer. Posene plasseres ved kontrollpunktene (klausul 3.3.2.).

10.2. Etter å ha testet biologiske indikatorer, fjernes NIR-ILC fra posene, legges i en plastpose og leveres til laboratoriet med riktig retning for videre forskning.

10.3. I det bakteriologiske laboratoriet, underlagt reglene for asepsis, utføres en studie. For dette formål fjernes de biologiske indikatorene BIK-ILC fra pakken og tilsettes (inkludert kontrollene) 1 ml av et farget næringsmedium med en indikator på bromtymolblått, og 0,5 ml av samme medium til Eppendorf-rør.

Avlinger med biologiske indikatorer Staphylococcus aureus og B.cereus inkuberes i en termostat ved en temperatur på (37+/-1) °C i 2 dager.

Resultatene registreres ved daglig visuell inspeksjon. I nærvær av kulturvekst endres fargen på mediet i nærvær av indikatoren fra blågrønn til gul. I dette tilfellet blir såing gjort på tett næringsmedium - kjøtt-pepton eller eggeplomme-salt-agar - for å sammenligne den isolerte kulturen med kontrollen.

10.4. Hvis det blir funnet utilfredsstillende resultater, varsler det bakteriologiske laboratoriet lederen av den medisinske institusjonen på telefon og sender ham en konklusjon om resultatene av bakteriologisk kontroll.

Hvis det oppdages vekst i minst én av avlingene til den biologiske indikatoren, utføres en andre kontroll av kammeroperasjonen. Samtidig blir dens tekniske tilstand, hastigheten på lasting av ting og riktigheten av deres plassering i cellen kontrollert mer nøye.

Vedlegg 1

Medieforberedelse

1. Hveteagar

Til 1 kg knust hvetekorn eller hvetegryn (Artek, Poltava) tilsett 2 liter destillert vann. Etter 18-24 timer, tøm forsiktig infusjonen (uten å klemme kornene) og tilsett destillert vann til 2 liter. Tilsett deretter 50 g agar-agar, varm opp til den er helt oppløst og pakk inn i et tykt lag bomull for langsom avkjøling og bedre nedbør. Dagen etter skjærer du av bunnfallet, smelter mediet og setter pH=7,4. Etter det helles mediet i reagensrør og steriliseres med rennende damp i tre dager på rad i 40-60 minutter. Etter sterilisering, klipp.

2. Kjøttpeptonbuljong med bromtymolblå indikator

Tilsett 5 g glukose til 1000 ml kjøtt-peptonbuljong til sistnevnte er helt oppløst, filtrer løsningen gjennom et bomullsgasfilter og tilsett 2,5 ml av en 1% alkoholløsning av bromthymolblått. Sett pH=7,3+/-0,1; Hell i hetteglass og steriliser ved 110°C i 30 minutter.

Fargen på mediet endres fra blågrønn til gul ettersom sporene spirer.

3. Glyserinbuljong (2 %)

Tilsett 20 ml glyserin til 1000 ml kjøtt-peptonbuljong pH=7,2+/-0,1, steriliser i 3 minutter ved en temperatur på 120 °C.

4. Glyserolagar (2 %)

Til 1000 ml kjøtt-peptonbuljong pH=7,2+/-0,1 tilsett 20 g agar-agar og 20 ml glyserin. Steriliser i 30 minutter ved 120°C.

5. Potet-glyserin medium

Rå poteter (basert på 200 g skrellede poteter per 1000 ml vann fra springen) vask grundig, skrell og øyne, kutt i små skiver, hell vann fra springen og kok i 30 minutter etter koking (unge poteter bør ikke spises!). Sett til side buljongen og filtrer den i kald tilstand gjennom et bomullsgasfilter. Bring volumet av filtratet til 1000 ml og sett pH=7,2+/-0,1. Tilsett 5 g pepton og 25 g agar. Varm opp under omrøring til agaren er helt smeltet, filtrer gjennom et bomullsgasfilter, tilsett deretter 1 g honning og 20 ml glyserin, hell i hetteglass og steriliser ved 120 ° C i 30 minutter. Etter sterilisering er mediet i hetteglassene på skrå.

6. Sukrose-gelatin-medium

Til 100 ml destillert vann tilsett 1 g gelatin og 5 g sukrose. La mediet stå i 2 timer ved romtemperatur. Steriliseres deretter i en autoklav ved 120°C i 30 minutter.

Vedlegg 2

Til testlaboratoriesenteret

Konklusjon

Biologiske indikatorer NIR-ILC NN______ ga ikke vekst av testkulturen.

Biologiske indikatorer NIR-ILC NN____ ga vekst til den opprinnelige kulturen.

"__" _________ 200__ laboratorium __________

Desinfeksjon av klær, sengetøy (puter, madrasser, tepper), lær, pels og andre produkter utføres i spesielle anlegg kalt desinfeksjonskamre.

Desinfeksjonskamre er tilgjengelige på kammerdesinfeksjonsavdelingene til desinfeksjons- og steriliseringssentraler, på sykehus for infeksjonspasienter, samt på tverrfaglige sykehus og fødeinstitusjoner. Mobile desinfeksjonskamre er tilgjengelige i sentrene for hygiene og epidemiologi.

Endelig desinfeksjon med desinfeksjonskamre er indisert for følgende infeksjonssykdommer: pest, kolera, tilbakefallsfeber, epidemisk tyfus, Brills sykdom, Q-feber (lungeform), miltbrann, viral hemorragisk feber, tyfoidfeber, paratyfus, tuberkulose, spedalskhet, soppsykdommer i hår, hud og negler (mikrosporia, trichophytosis, rubrophytosis, favus), skabb.

Kammerdesinfeksjon bør utsette ting ikke bare for pasienten, men også for de som var i kontakt med ham. Ting som er gjenstand for kammerdesinfeksjon sorteres og legges separat i poser for desinfeksjon i ulike typer kammer. For alle ting som sendes til cellen, blir det utarbeidet en kvittering i to kopier, hvorav den ene overlates til eierne av tingene, og den andre sendes til cellen sammen med tingene. Ting som legges i poser tas ut og lastes inn i en ambulanse umiddelbart etter at de er hentet. Poser med ting før de tas ut av ildstedet bør vannes fra utsiden med en desinfiserende løsning.

Kamrene er prefabrikkert og bygget inn i bygget på stedet på en slik måte at kammerdørene åpner seg inn i forskjellige isolerte rom. En dør - til laste (skitne) halvdelen, hvor ting leveres og hvor ting beregnet på desinfeksjon er sortert, og den andre - til lossing (ren), hvor ting blir losset etter at desinfeksjon er fullført.

Avhengig av det aktive (desinfeksjons)middelet er kamrene delt inn i damp-, damp-formalin-, varmluftkamre.

dampkamre. I dampdesinfeksjonskamre er det aktive middelet mettet vanndamp. Vanndamp, under kondensering, avgir en stor mengde varme, og trenger også raskt og dypt inn i ting og varmer dem jevnt opp. I dampkamre utføres desinfeksjon med flytende damp ved normalt eller overtrykk opp til 0,2-1 atm (teknisk overskuddsatmosfære), som tilsvarer en temperatur på 100 til 120°C. Dampflytende og trykk bidrar til raskere penetrering av damp inn i ting. Når du utfører desinfeksjon i dampkamre, sørg for at luften er fullstendig utstøtt fra kammeret, ellers vil desinfeksjonsregimet bli brutt. For disse formålene tilføres damp i dampkamrene ovenfra, og luft presses ut gjennom åpninger plassert i de nedre delene av kammeret.

Stasjonært dampkammer til Krupin-systemet. Kammeret har form som en sylinder plassert horisontalt (fig. 8). Volumet er 1,5 eller 2,76 m 3 . Dører er plassert i endene av kammeret og går inn i laste- og losserommene. Dørene lukkes med sentrallås, som sikrer tettheten. Fra innsiden er Krupins kammer laget av metall, fra utsiden har det en treforing for termisk isolasjon.

Varmeledningen som forlater dampkjelen, når den nærmer seg Krupin-kammeret, er delt inn i tre damprørledninger: 1) går inn i kammeret nedenfra for å tilføre damp til varmebatteriene; 2) er festet til kammeret ovenfra og kommer inn i det i form av et perforert rør plassert langsgående over paraplyen (gjennom hvilken damp tilføres direkte til kammeret); 3) går til ventilasjonsrøret som ligger i den øvre delen av kammeret nærmere lasterommet (damp føres gjennom det inn i sifonen (røret inne i ventilasjonsrøret) for å stimulere ventilasjonen). I bunnen av kammeret går to rør ut. Den første fjerner luft, damp og kondensat fra kammeret. Et termometer er installert på dette røret for å måle temperaturen på den utgående dampen, og i den nedre delen er det en ventil for kondensatutslipp. Kondensat fra varmeinnretninger slippes ut gjennom det andre røret inn i dampfellen (fig. 9).

Et vinkeltermometer er installert i døren til kammeret, som åpner inn i losserommet, og en tilførselsventilasjonsåpning er plassert litt lavere. På toppen av kammeret er det en trykkmåler og en sikkerhetsventil.

Det er varmeovner på gulvet i kammeret. En paraply laget av galvanisert jern er installert under taket, og beskytter ting mot kondens og direkte eksponering for en dampstråle. Kammeret har en tralle som strekker seg i begge retninger. Ting i den, avhengig av deres natur, henges eller stables på et tregitter.

I dampkammeret til Krupin-systemet kan du behandle sengetøy (puter, madrasser, tepper), bomullsartikler, samt sterkt fargede og flate ullartikler. Skittent lin bør ikke desinfiseres i dette kammeret, da flekkene som dannes etter behandlingen ikke vaskes av.

Arbeidsrekkefølgen på dampdesinfeksjonskammeret:

1. Før arbeidet starter, varmes kammeret opp til 80°C; for dette slippes damp inn i den gjennom et perforert rør.

2. Kammeret kjøles ned til 50°C og fylles med ting beregnet for desinfeksjon. Bærbare ting henges i kammeret med en hastighet på 10-12 sett med klær per 1 m 2 (sett 6 kg), sengetøy er løst plassert i vognen med en hastighet på 50 kg per 1 m 3 av kammeret. Etter lasting lukkes dørene hermetisk med sentrallås.

3. Ting i kammeret varmes opp og luft presses ut av det. For å gjøre dette slippes små porsjoner damp inn i kammeret gjennom et perforert rør ovenfra. Ventilen på kilderøret holdes helt åpen. Når temperaturen på den utgående dampen når 100°C, indikerer dette at luften fra kammeret nesten presses ut.

4. Opprettholde desinfeksjonsregimet under eksponeringstiden (tabell 12). Hvis behandlingen av ting vil bli utført ved normalt trykk, begynner eksponeringstiden å telle fra det øyeblikket temperaturen på 100 ° C nås av den utgående dampen. Hvis behandlingen må utføres ved forhøyet trykk, reduseres dampeffekten, hvorved ventilen på det utgående røret skrus litt, men ikke helt lukket, for å holde dampen i bevegelse. Når den innstilte temperaturen og trykket er nådd, begynner eksponeringsnedtellingen. Trykket og temperaturen under eksponering opprettholdes ved å justere tilførsel og frigjøring av damp.

5. Redusert trykk i kammeret etter endt eksponeringstid. For å gjøre dette, stopp damptilførselen til kammeret og åpne ventilene helt på utgående og ventilasjonsrør.

6. Lufte kammeret og tørke ting. Ved oppnåelse av normalt trykk slippes damp inn i radiatorene, ejektoren (heverten) og ventilasjonsinntaket åpnes. Ventilasjon av kammeret og tørking av ting varer 10-15 minutter.

7. Lossing av ting på slutten av tørking gjennom en dør som åpnes til en ren halvdel.

Tabell 12

Alternativer for desinfeksjon og desinfeksjon

i dampkamre